新型植物基因组DNA快速提取试剂盒
DE117
50次、100次
适用于快速提取植物组织、细胞、真菌基因组DNA
室温(另含-20℃组分)
规格 价格
50次 ¥720
100次 ¥1260

1/适用范围:

适用于快速提取植物组织、细胞、真菌基因组DNA。

 

 

2/试剂盒组成、储存、稳定性:

试剂盒组成

保存

50次

DE117-01

100次

DE117-02

RNase A(10mg/ml)

-20℃

250 μl

500 μl

裂解液A

-20℃

20 ml

40 ml

裂解液B

-20℃

7 ml

13 ml

裂解液C

室温

15 ml                   25 ml      
第一次使用前按说明加指定量乙醇

漂洗液WB

室温

15 ml                   25 ml        
第一次使用前按说明加指定量乙醇

洗脱缓冲液EB

室温

15 ml

15 ml

吸附柱DA

室温

50个

100个

收集管CT(2ml)

室温

50个

100个

                                         本试剂盒在室温储存12个月不影响使用效果。

 

 

3/储存事项:

① 裂解液A、C低温时可能出现析出和沉淀,可以在65℃水浴几分钟帮助重新溶解(裂解液C加入乙醇前可加热,加入乙醇后不可加热),恢复澄清透明后冷却到室温即可使用。

② 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。

 

 

4/产品介绍:

该试剂盒采用DNA吸附柱和新型独特的溶液系统,适合于从含酚类、多糖类和酶抑制物的植物样品中快速简单地提取基因组DNA。可在30分钟内完成一个或多个100mg新鲜或20mg干燥的植物样品DNA的纯化工作。提取过程不需要用到有毒的酚氯仿等有机物抽提,也不需要用到耗时的异丙醇或乙醇沉淀,并能快速高效地去除多糖类、酚类和酶抑制物等杂质,纯化的DNA可直接用于PCR、酶切和杂交等实验。

新鲜或干燥的植物组织(细胞)磨碎后经裂解液裂解;蛋白质、多糖、细胞残片被沉淀去除;然后基因组DNA在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜, 再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤, 进一步将多糖,多酚和细胞代谢物,蛋白等杂质去除, 最后低盐的洗脱缓冲液将纯净基因组DNA从硅基质膜上洗脱。

 

 

5/产品特点:

① 离心吸附柱内硅基质膜全部采用特制吸附膜,柱与柱之间吸附量差异极小,可重复性好。

② 不需要使用有毒的苯酚等试剂,也不需要乙醇沉淀等步骤。

③ 快速,简捷,单个样品操作一般可在1小时内完成。

④ 数种去多糖、多酚成份和多次柱漂洗确保高纯度,OD260/OD280典型的比值达1.7~1.9,可直接用于PCR,Southern-blot和各种酶切反应。

 

 

6/注意事项

① 所有的离心步骤均在室温完成,使用转速可以达到13,000 rpm的传统台式离心机。

② 开始实验前将需要的水浴先预热到65℃备用。

③ 裂解液C中含有刺激性化合物,操作时要戴乳胶手套,避免沾染皮肤,眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时,要用大量清水或者生理盐水冲洗。

④ 不同来源的植物组织材料中提取DNA 的量会有差异,一般100mg新鲜组织典型产量可达3-25μg。

⑤ 洗脱液EB不含有螯合剂EDTA, 不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱, 但应该确保pH大于7.5, pH过低影响洗脱效率。用水洗脱DNA应该保存在-20℃。DNA如果需要长期保存,可以用TE缓冲液洗脱 (10mM Tris-HCl, 1mM EDTA,pH 8.0),但是EDTA可能影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。

 

 

7/操作步骤:(实验前请先阅读注意事项)

提示:

  1. ● 第一次使用前请先在漂洗液WB中加入指定量无水乙醇,充分混匀,加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇,以免多次加入!
  2. ● 第一次使用前请先在裂解液C中加入指定量无水乙醇!
  3.  
  4. 1、取适量植物组织(新鲜组织100 mg 或干重组织20 mg,可适当多取一些样品弥补粘在研钵上的损失)在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。研磨前,可准备一个1.5ml 离心管,加入400μl裂解液A 和4μl RNase A(10 mg/ml)室温备用。
  5. 2、转移细粉(新鲜组织100 mg 或干重组织20 mg)到前面准备的1.5ml离心管(已加入400μl裂解液A 和4μl RNase A(10 mg/ml)旋涡振荡,充分混匀帮助裂解。如果组织裂解困难,可根据需要加一个轻柔匀浆10秒的步骤帮助裂解。大多数情况下不需要离心去除未完全裂解的组织,因为后面有一个离心去除的步骤。
  6. 3、65℃水浴10分钟,在水浴过程中颠倒离心管2-3次,混合样品。
  7. 4、加入130 μl 裂解液B,充分混匀,冰上放置5分钟, 14,000 rpm 离心5-10 分钟,小心吸取上清到一个新的1.5ml离心管,注意不要吸到界面物质。
  8. 5、计算上清量,加入1.5倍体积的裂解液C(请先检查是否已加入无水乙醇!),立即吹打混匀。加入裂解液C可能会出现絮状沉淀,但不影响DNA提取。注意将裂解液C直接加入到上清并立即吹打混匀。
  9. 6、将上一步所得混合物(包括可能出现的沉淀)加入一个吸附柱DA中,(吸附柱DA放入收集管CT中)13,000 rpm离心30-60秒,倒掉收集管CT中的废液(先加650μl离心,弃废液,再加入剩余的溶液,再次离心)。
  10. 7、加入600μl漂洗液WB(请先检查是否已加入无水乙醇!),12,000 rpm 离心30秒,弃掉废液。
  11. 8、加入600μl漂洗液WB,12,000 rpm 离心30秒,弃掉废液。
  12. 9、将吸附柱DA放回空收集管CT中,13,000 rpm离心2分钟,尽量除去漂洗液, 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
  13. 10、取出吸附柱DA,放入一个干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加100μl洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液可事先在 65-70℃水浴中预热), 室温放置3-5分钟,12,000 rpm 离心1分钟。将得到的溶液重新加入吸附柱中,室温放置2分钟,12,000 rpm离心1分钟。洗脱体积越大,洗脱效率越高,如果预计和需要产量高,可增大洗脱体积,如果需要DNA浓度较高,可以适当减少洗脱体积, 但是最小体积不应少于50μl,体积过小降低DNA洗脱效率,减少DNA产量。
  14. 11、DNA可以存放在2-8℃,如果要长时间存放,可以放置在-20℃。

 

 

8/问题与解决方法

问题

评论与建议

DNA产量低

*处理材料过量或者裂解不完全

-建议:使用适量的起始材料,充分研磨或者匀浆

*结合条件不恰当

-建议:步骤5精确估计上清量,加入1.5倍体积裂解液C量要准确

RNA残留

*植物RNA含量太丰富

-建议:提高RNase A处理浓度

未提取到DNA

*漂洗液WB中忘记加无水乙醇

-建议:第一次实验时,在漂洗液WB中加入指定量无水乙醇。

离心柱堵塞

*研磨裂解不充分,团块多;裂解物太粘稠;离心力太小

-建议:参见步骤2,加一个离心步骤去除;减低起始材料量,不要处理过量,加大离心力

洗脱下来的
DNA溶液带颜色
或者膜上有明显
的色素残留

*漂洗次数不够

-建议:步骤8完成后,加500μl乙醇再漂洗一遍

*起始材料太多过量

-建议:减少起始处理材料,不要过量

洗脱下来的
DNA产量低

*离心柱残留有较多乙醇或者底部不慎沾有乙醇

-建议:确保做了步骤9,否则残留乙醇会影响洗脱效率。

*使用了水或者其它非最佳液体代替洗脱缓冲液

-建议:仔细阅读步骤10和注意事项5和只使用洗脱缓冲液EB洗脱。

*洗脱缓冲液量偏低

-建议:使用200μl洗脱缓冲液洗脱

A260吸光值
异常偏高

*一些硅基质膜成分一起洗脱下来,干扰了吸光值

-建议:将洗脱的基因组DNA溶液13,000rpm再离心一分钟,小心取上清使用。

DNA下游酶切
不能切开或者
酶切不完全

*一些硅基质膜成分一起洗脱下来,抑制了酶切反应

-建议:将洗脱的基因组DNA溶液13,000rpm再离心一分钟,小心取上清使用。

*离心柱残留有较多乙醇或者底部不慎沾有乙醇抑制了酶切反应

-建议:确保做了步骤9,然后空气中晾几分钟,让残留乙醇挥发。